α-淀*酶（α-AL）活性檢測試劑盒（碘-淀粉比色法）說明書

可見分光光度法

注意：本產品試劑有所變動，請注意并嚴格按照該說明書操作。

貨號：BC4570

規(guī)格：50T/24S

產品組成：使用前請認真核對試劑體積與瓶內體積是否一致，有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。

溶液的配制：

1、 試劑一：臨用前加入12.5mL試劑三，置于常溫水中并加熱至煮沸，期間不斷攪拌粉劑至溶解，用不完的試劑2-8℃保存8周；

2、 標準品：10 mg淀粉標準品。臨用前加10 mL試劑三，置沸水浴中振蕩溶解，配成1 mg/mL淀粉標準液，2-8℃保存四周。

產品說明：

淀*酶負責水解淀粉，包括α-淀*酶和β-淀*酶。α-淀*酶(EC 3.2.1.1)可隨機地作用于淀粉中的α-1,4-糖苷鍵，生成葡萄糖、麥芽糖、麥芽三糖、糊精等還原糖，同時使淀粉的粘度降低，因此又稱為液化酶。

α-淀*酶催化淀粉分子中的α-1,4糖苷鍵水解，產生葡萄糖、麥芽糖以及糊精等，碘可以與未被水解的淀粉結合，生成在570nm下有特征吸收峰的復合物，其深淺可計算出淀*酶的活力單位。α-AL耐熱，但是β-淀*酶可在70℃鈍化15min。因此粗酶液經過70℃鈍化15min，就只有α-AL能夠催化淀粉水解。

注意：實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果樣本吸光值不在測量范圍內建議稀釋或者增加樣本量進行檢測。

需自備的儀器和用品：

可見分光光度計、恒溫水浴鍋、臺式離心機、可調式移液器、1mL玻璃比色皿、研缽/勻漿器、蒸餾水。

操作步驟：

一、樣本處理（可適當調整待測樣本量，具體比例可以參考文獻）

1、組織：稱取約0.1g樣本，加1mL蒸餾水勻漿；勻漿后在室溫下放置提取15min，每隔5min振蕩1次，使其充分提?。?/span>6000g，室溫離心10min，吸取上清液即為淀*酶原液。

2、液體：直接檢測。（若有渾濁則離心后進行測定）

二、測定步驟

1、 分光光度計預熱30min以上，調節(jié)波長至570nm，蒸餾水調零。

2、 將淀粉標準液用蒸餾水稀釋為0.2、0.1、0.05、0.025、0.0125、0.00625、0.003125、0.0015625mg/mL的標準溶

液。

實驗中每個標準管需250µL標準溶液。

3、 按操作表依次加入各試劑：

混勻后于570nm處讀取測定管、對照管、空白管、標準管、標準空白管吸光度，分別記為A測定、A對照、A空白、A標準和A標準空白，計算ΔA測定=A空白-（A測定-A對照），ΔA標準=A標準-A標準空白。空白管和標準曲線只需做1-2次。

三、α-淀*酶活性計算

1、標準曲線的繪制：

根據標準管的濃度（x，mg/mL）和吸光度ΔA標準（y，ΔA標準），建立標準曲線。根據標準曲線，將ΔA測定（y，ΔA測定）帶入公式計算樣本濃度（x，mg/mL）。

2、α淀*酶活性的計算：

（1）按照樣本質量計算

單位定義：每g組織每分鐘消耗1mg淀粉定義為1個酶活力單位。

α-淀*酶活性 (U/g 質量)=x×V樣÷(W×V樣÷V樣總)÷T=0.1×x÷W

（2）按照蛋白質濃度計算

單位定義：每mg組織蛋白每分鐘消耗1mg淀粉定義為1個酶活性單位。

α-淀*酶活性 (U/mg prot)=x×V樣÷（V樣×Cpr）÷T=0.1×x÷Cpr

（3）按照液體體積計算

單位定義：每mL液體每分鐘消耗1mg淀粉定義為1個酶活性單位。

α-淀*酶活性 (U/mL)=x×V樣÷V樣÷T=0.1×x

V樣：加入反應體系中樣本體積，0.25mL；V樣總：樣本總體積，1mL；Cpr：樣本蛋白質濃度，mg/mL；W：樣本質量，g；T：反應時間，10min。

注意事項：

吸光值大于1.2或者ΔA大于0.8 時，可以對樣本進行適當稀釋后測定。

實驗實例：

1. 取約0.1g藜葉片，加1mL蒸餾水勻漿，勻漿后在室溫下放置提取15min，每隔5min振蕩1次，使其充分提取；6000g，室溫離心10min，吸取上清液，之后按照測定步驟操作，測得計算ΔA測定=A空白-（A測定-A對照）=0.915-（0.703-0.176）=0.388，帶入標準曲線y=2.1736x+0.0057，計算x=0.176，按樣本質量計算酶活得：

α-淀*酶活性 (U/g 質量)=0.1×x÷W=0.176 U/g 質量。

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